请教 活菌计数方法

西追

最近可能会考虑对某工厂设备循环水进行活菌计数以考察不同情况下循环水中细菌存活量，请教各位除了传统方法外，是否有比较快捷简单的计数方法。

例如，通过染色显微观察是否可行？

008chf

你所说的传统方法是什么啊。
我们是用血细胞计数板直接在显微镜下看活菌。

西追

补充一下啊，我说的传统方法包括血球计数板计数，考虑到由于细菌个体非常微小，使用血球计数板如何来观察计数我想听听各位的想法

另外传统方法比如稀释平板计数，时间上可能比较长，老板不太愿意考虑

西追

关于血球计数板观察细菌，是不是可以用油镜呢？如果可以具体怎么操作，我的意思是血球计数板能使用火焰固定细胞后再加香柏油吗？

008chf

血球计数板 计数方法 一般的书上都很详细，请楼主自己查下吧。
    这是我随便搜的：
二、基本原理

    利用血球计数板在显微镜下直接计数，是一种常用的微生物计数方法。此法的优点是直观、快速。将经过适当稀释的菌悬液（或孢子悬液）放在血球计数板载玻片与盖玻片之间的计数室中，在显微镜下进行计数。由于计数室的容积是一定的（ 0．1mm2），所以可以根据在显微镜下观察到的微生物数目来换算成单位体积内的微生物总数目。由于此法计得的是活菌体和死菌体的总和，故又称为总菌计数法。

    血球计数板，通常是一块特制的载玻片，其上由四条槽构成三个平台。中间的平台又被一短横槽隔成两半，每一边的平台上各刻有一个方格网，每个方格网共分九个大方格，中间的大方格即为计数室，微生物的计数就在计数室中进行。

计数室的刻度一般有两种规格，一种是一个大方格分成16个中方格，而每个中方格又分成25个小方格；另一种是一个大方格分成25个中方格，而每个中方格又分成16个小方格。但无论是哪种规格的计数板，每一个大方格中的小方格数都是相同的，即16×25=400小方格。
  每一个大方格边长为1mm，则每一大方格的面积为1mm2，盖上盖玻片后，载玻片与盖玻片之间的高度为0．1mm，所以计数室的容积为0．1mm3。

  在计数时，通常数五个中方格的总菌数，然后求得每个中方格的平均值，再乘上16或25，就得出一个大方格中的总菌数，然后再换算成1ml菌液中的总菌数。  

  三、器材

  酿酒酵母菌悬液，血球计数板，显微镜，盖玻片，无菌毛细管。

  四、操作步骤

  1．稀释

  将酿酒酵母菌悬液进行适当稀释，菌液如不浓，可不必稀释。

  2．镜检计数室

  在加样前，先对计数板的计数室进行镜检。若有污物，则需清洗后才能进行计数。

  3．加样品

  将清洁干燥的血球计数板盖上盖玻片，再用无菌的细口滴管将稀释的酿酒酵母菌液由盖玻片边缘滴一小滴（不宜过多），让菌液沿缝隙靠毛细渗透作用自行进入计数室，一般计数室均能充满菌液。注意不可有气泡产生。

  4．显微镜计数

  静止5分钟后，将血球计数板置于显微镜载物台上，先用低倍镜找到计数室所在位置，然后换成高倍镜进行计数。在计数前若发现菌液太浓或太稀，需重新调节稀释度后再计数。一般样品稀释度要求每小格内约有5—10个菌体为宜。每个计数室选5个中格（可选4个角和中央的中格）中的菌体进行计数。位于格线上的菌体一般只数上方和右边线上的。如遇酵母出芽，芽体大小达到母细胞的一半时，即作两个菌体计数。计数一个样品要从两个计数室中计得的值来计算样品的含菌量。

  5．清洗血球计数板

  使用完毕后，将血球计数板在水笼头上用水柱冲洗，切勿用硬物洗刷，洗完后自行晾干或用吹风机吹干。镜检，观察每小格内是否有残留菌体或其他沉淀物。若不干净，则必须重复洗涤至干净为止。

zhanghjian

如果没理解错，楼主是想在血球计数时能区分活体，建议采用活体染色，方法如下
1）在小离心管中，用Hanks液对1%中性红水溶液作10倍稀释，1500rpm离心7分钟，取上清液置另一干净的离心管中作为染色液。

2）将细胞悬液与染液4：1混合，混匀后加盖玻片静置15-20分钟。

3）显微镜观察染色情况。死细胞不着色，活细胞可吸收中性红溶液而呈红色。

fajiaorenrj

用血球记数板，个体较大的不用油镜就可以